跟其他類型的核酸酶一樣，SAN HQ高鹽核酸酶和M-SAN HQ中鹽核酸酶的滅活方法有很多，分為可逆滅活及不可逆滅活。金屬離子螯合劑如EDTA會可逆抑制兩者的活性，加入的EDTA濃度一般是溶液中Mg2+濃度的2倍左右即可完全抑制活性；后續補加過量的Mg2+即可恢復核酸酶活性。加熱、還原劑（如DTT）、咪唑、甘油及表面活性劑（如高于15%濃度的Triton X-100、SDS、尿素等）等都可以使其不可逆失活。在生物工藝流程，需要結合上下游應用需要選擇合適的方法去除或滅活核酸酶。安徽中鹽核酸酶哪家好呢，歡迎咨詢上海倍篤生物 。浙江M-SAN中鹽核酸酶70950

在不同的鹽濃度條件下，AAV病毒載體的存在形式不同。低鹽濃度條件下，AAV病毒顆粒表面會通過電荷作用等非特異結合到HCD上，從而產生病毒顆粒團聚現象。隨著溶液鹽濃度上升，AAV病毒顆粒與HCD的離子相互作用會被破壞，AAV病毒顆粒會逐漸解離。當鹽濃度升到更高范圍（>400mM左右），AAV病毒顆粒與HCD的結合更弱，AAV顆粒更穩定。因此，在高鹽濃度溶液中，AAV顆粒更加穩定，且有數據表明高鹽濃度不會削弱AAV的侵染能力。所以，我們推薦提高AAV病毒生產中的鹽濃度。M-SAN中鹽核酸酶M-SAN HQ中鹽核酸酶兼容常見細胞培養基，在多種培養基條件下去除核酸污染效率更高；

在生物工藝流程中，需要使用核酸酶去除終產品中的核酸污染，而核酸酶作為外源成份，也需要在生產流程中去除。核酸酶去除工藝包括熱滅活法、酶抑制劑、離子交換和親合層析法等。慢病毒LV的pI在6.0-6.5左右，包裝了完整基因組DNA后的AAV病毒顆粒PI大致為5.9，來自于S.marcescens的全能核酸酶pI 6.85左右，M-SAN HQ中鹽核酸酶pI 8.7左右。因此，在同樣的條件下，從LV/AAV溶液中去除M-SAN HQ中鹽核酸酶比去除Benzonase全能核酸酶更容易、更徹底。

文章作者按照經典的慢病毒載體生產流程操作，在融化、核酸酶消化、澄清、超濾等步驟留樣，分別檢測dsDNA濃度及功能性LV病毒滴度。經過分析發現，——去除主要發生在澄清環節，能去除dsDNA的80%-90%；2. M-SAN HQ中鹽核酸酶比Benzonase能更高效去除dsDNA，即M-SAN HQ組的TFF回流液中dsDNA殘留量是Benzonase組回流液的20%左右；3. LV病毒滴度在澄清環節損失30%-40%；4. M-SAN HQ組的TFF回流液中LV病毒滴度略高于Benzonase組的回流液數據。宿主細胞DNA主要以染色質形態存在，其中組蛋白通過離子作用及疏水作用與DNA緊密結合；

慢病毒大規模純化的捕獲步驟包括：膜過濾澄清，隨后切向流過濾/超濾或者體積排阻色譜濃縮。此外，需用核酸酶（benzonase或M-SAN HQ中鹽核酸酶）來去除細胞殘留的、質粒來源的DNA污染。這兩個步驟順序可以調整，依據項目工藝而定。兩種工藝路線各有優缺點：先用核酸酶消化的優點是可去除大的DNA片段，且后續步驟可以去除殘留核酸酶；但所用的核酸酶的量也非常大。與此相反，將核酸酶步驟后置的優點是大幅降低核酸酶的量(成本降低)；但后面的步驟必須有將核酸酶去除的能力。此外，后期用核酸酶的缺點是核酸污染可能會結合慢病毒顆粒形成沉淀，進而導致慢病毒在純化中流失，從而影響得率。M-SAN HQ中鹽核酸酶是用Pichia pastoris表達的重組非特異內切核酸酶。安徽培養基條件中鹽核酸酶

生理鹽濃度下，M-SAN HQ中鹽核酸酶性能優于常用核酸酶，對HCD的去除有些本質區別。浙江M-SAN中鹽核酸酶70950

經典的慢病毒載體（LV）的生產工藝如下，——三質粒系統瞬時轉染HEK293細胞系，轉染24小時后LV由轉染陽性細胞生產并排出到培養上清液中；收獲上清培養液后，加入核酸酶去除HCD污染，通過澄清步驟去除大的細胞碎片等雜質；下游純化步驟分離LV載體，純化方法包括切向流過濾TFF、色譜純化及超速離心；純化后的LV病毒顆粒經過無菌過濾，更換到優化后的配方中，灌裝并冷凍保存。每批Car-T生產時取對應量的LV病毒，切忌反復凍融，否則LV病毒會失活。浙江M-SAN中鹽核酸酶70950