如何科學正確地使用凍存管-杭州邁恩
凍存管的使用是一門學問,并不是打開液氮罐、放入凍存管、關上液氮罐這樣簡單的三部曲可以完成的。科學正確地使用凍存管,可以避免樣本的損失,并保護試驗人員的安全。
冷凍步驟
1.用預熱的PBS溶液洗滌細胞,吸取溶液,含有胰蛋白酶和EDTA的溶液覆蓋細胞(薄薄的液層足夠,胰蛋白酶和EDTA的濃度需要根據細胞系確定)。
2.37℃孵育細胞3-5分鐘。
3.細胞從底部脫離之后,終止孵育,加入含有血清的培養基,用移液器輕輕地懸浮細胞。
4.離心細胞懸液(500 x g, 5分鐘),用含有血清的培養基重新懸浮。
5.細胞計數。
6.離心細胞懸液(500 x g, 5分鐘),去除上清液,用適量體積的含有血清的培養基重新懸浮細胞。
7.以1:1體積比混合細胞和凍存液(60%培養基,20%胎牛血清,**MSO),然后轉移到Cryo.sTM凍存管中。凍存的細胞密度為 1-5×106 個/毫升。
8.含有細胞的Cryo.sTM凍存管建議以?1 K / min 的速率降溫,可以將凍存管置于?70℃含有異丙醇的容器中。如果Cryo.sTM凍存管存儲其他樣品,可以直接放置在?20℃,?70℃或者液氮的氣相。為了確保樣品冷凍均勻,4 mL和5 mL的Cryo.sTM凍存管需要先置于在?20℃冰箱過夜,然后再轉移到?70℃或者液氮的氣相。
9.然后轉移Cryo.sTM凍存管到液氮罐。為了避免污染(如支原體)和安全考慮,請將Cryo.sTM凍存管置于液氮的氣相,切勿置于液相。
解凍步驟
1.從液氮罐取出凍存的細胞后立即置于37℃水浴搖晃Cryo.sTM凍存管1-2分鐘。解凍過程需要越快越好。
2.轉移解凍的細胞于15 mL離心管,立即用大量的含有血清的細胞培養基混勻。
3.500 x g離心細胞5 分鐘,去除上清液,用適量的含有血清的細胞培養基重新懸浮細胞,然后轉移到細胞培養瓶。
4.按照建議的細胞濃度接種。
5.接下來的12小時細胞進入靜默期。
6.間隔24小時和48小時更換培養基。