外泌體的提取、分離方法：開發高效、快速、穩定，并且保持外泌體結構和生物功能完整性的方法，是目前外泌體應用于臨床的基礎和前提。從細胞上清和體液中提取分離外泌體的方法很多，但是外泌體的純度和產量卻和分離方法息息相關。通常分離步驟少、產率高，但是純度會受到影響。鑒于每種分離方法都有其優缺點，實驗可以根據樣本來源、下游實驗目的等，選擇合適的外泌體分離方法。2015年，國際囊泡組織(InternationSocietyforExtracelluarVesicles,ISEV)指出，簡單依靠一種分離方法得到的外泌體的純度和產量都難滿足實驗的需求。因此，推薦聯合使用各種方法，從而得到高純度和高產量的外泌體。也可以作為治病手段，未來有可能作為藥物的天然載體用于臨床治病。天津外泌體提取試劑廠家

具體步驟是:以下所有步驟都在4℃下進行，1、300×g10min，棄沉淀，去除細胞2、2000×g20min，棄沉淀，去除死細胞3、10,000×g30min，棄沉淀，去除細胞碎片等亞細胞成分4、10,000×g70min，棄上清，沉淀即為外泌體5、PBS（每10ml細胞培養液用30mlPBS重懸）清洗沉淀物，混勻，10,000×g70min6、lmlPBS溶解沉淀（外泌體），立即使用或置于-80℃備用。7、一般超速離心法會結合密度梯度離心，這樣得到的外泌體更純，具體做法第4步后蔗糖梯度離心，10,000×g70min，以去除密度大于1.21g/ml的顆粒。優點是：成本低，操作簡單，獲得的囊泡數較多。缺點是：耗時耗力（需用時8-30h，并且每次只能處理6個樣本），獲得的外泌體純度不是很高，高速及重復離心也會對外泌體產生很大的傷害，并且不適用于如血漿和血清等粘性液體生物樣本。杭州正規外泌體提取試劑外泌體提取：超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行。

外泌體是一種存在于細胞外的多囊泡體，可通過細胞內吞泡膜向內凹陷形成多泡內涵體，內涵體與細胞膜融合后釋放其中的小囊泡。外泌體的直徑在40-110nm之間，其中包含RNA、蛋白質、microRNA等多種物質，存在于血液、唾液、尿液、腦脊液和母乳等多種體液中。外泌體從發現至今已有30多年的歷史，雖然較初被認為可能是細胞的“垃圾”，所以才被排出來，但是近年來研究表明外泌體具有功能活性并可進行細胞間信息傳遞。如今，研究已經發現外泌體在抗原提呈細胞中呈遞抗原程中、一些病癥細胞發生的發展、神經細胞信號轉導過程中都發揮著重要作用。利用化合物沉淀將法外泌體沉淀出來。

專利申請利用分離培養人尿液來源細胞并收集培養基來進行體外培養，直接把外泌體從尿液中沉降下來，無須分離培養人尿液來源細胞并收集培養基。人尿液來源細胞的外泌體的獲取方法，是首先分離培養人尿液來源細胞并收集培養基，將人尿液來源細胞的培養基通過0.22微米濾膜過濾，以去除大的細胞殘片以及其它雜質；然后離心除去細胞器，留取上清；再使用可截留100KD分子量的膜，通過離心截留上清中的外泌體，截留完成后，使用PBS對膜進行洗脫即得到外泌體濃縮液。外泌體提取：超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎。

人體內多種細胞及體液均可分泌外泌體，包括內皮細胞、免疫細胞、血小板、平滑肌細胞等。當其由宿主細胞被分泌到受體細胞中時，外泌體可通過其攜帶的蛋白質、核酸、脂類等來調節受體細胞的生物學活性。外泌體介導的細胞間通訊主要通過以下三種方式：一是外泌體膜蛋白可以與靶細胞膜蛋白結合，進而靶細胞細胞內的信號通路。二是在細胞外基質中，外泌體膜蛋白可以被蛋白酶剪切，剪切的碎片可以作為配體與細胞膜上的受體結合，從而細胞內的信號通路。有報道稱一些外泌體膜上蛋白在其來源細胞膜上未能檢測出。三是外泌體膜可以與靶細胞膜直接融合，非選擇性的釋放其所含的蛋白質、mRNA以及microRNA。用于外泌體提取的體液收集注意事項：抽血技巧。天津外泌體提取試劑廠家

根據外泌體表面的特異生物化學特性通過提取試劑的特異配方把外泌體從水相中沉降下來。天津外泌體提取試劑廠家

人體內多種細胞及體液均可分泌外泌體，包括內皮細胞、免疫細胞、血小板、平滑肌細胞等。當其由宿主細胞被分泌到受體細胞中時，外泌體可通過其攜帶的蛋白質、核酸、脂類等來調節受體細胞的生物學活性。外泌體介導的細胞間通訊主要通過以下三種方式：一是外泌體膜蛋白可以與靶細胞膜蛋白結合，進而靶細胞細胞內的信號通路。二是在細胞外基質中，外泌體膜蛋白可以被蛋白酶剪切，剪切的碎片可以作為配體與細胞膜上的受體結合，從而細胞內的信號通路。有報道稱一些外泌體膜上蛋白在其來源細胞膜上未能檢測出。三是外泌體膜可以與靶細胞膜直接融合，非選擇性的釋放其所含的蛋白質、mRNA以及microRNA天津外泌體提取試劑廠家