細胞免疫熒光實驗注意事項：非特異性染色：是否滅活內源性過氧化物酶；孵育過程中干片；抗原熱修復過度。染色過深：一抗濃度過高；染色試濃度過高或孵育時間過長；染色劑濃度過高或孵育時間過長。通常實驗室先固定細胞再進行通透，但若檢測抗原是水不溶性蛋白，可先通透再固定，這樣可以通過通透去除一些水溶性蛋白，進而可降低免疫熒光背景和非特異性信號；建議設陰性對照組，消除由于抗體非特異性結合而產生的背景染色；選擇醛類固定液時，保持其新鮮度，較好現配現用，使用不新鮮的醛類固定液自發熒光背景會升高。免疫熒光技術可以用于研究肉瘤的發生和發展過程。PD-1免疫組化

基于熒光成像的技術對于查詢細胞和組織的結構和功能方面非常有用。當與免疫化學結合時，熒光成像技術的分析能力增加，增強了這種技術在普遍的研究和臨床應用中的實用性，使其成為寶貴的工具。免疫熒光顯微鏡通過使活細胞成像能夠可視化整個細胞器，徹底改變了細胞生物學領域。免疫組織化學和免疫細胞化學是結合抗原抗體結合能力進行細胞分析的常用熒光成像技術。免疫熒光（IF）是一種強大的免疫染色技術，利用顯微鏡觀察與靶蛋白和其他目標分子結合的熒光素標記抗體。免疫熒光用于鑒定細胞中的細胞和組織特異性抗原；可視化蛋白質的存在與否、細胞定位和活化狀態；并分析免疫反應。PD-1免疫組化熒光抗體技術可以用于檢測和定位細胞或組織中的特定抗原物質。

免疫熒光固定（防止離體組織自溶抗原擴散），固定液包括：有機溶劑（甲醇、乙醇等）；交聯劑（4%PFA、10%中性福爾馬林），固定液的選擇取決于被研究抗原的性質及所用抗體的特性，不過，目前甲醛用的還是較多的，但針對磷酸化的抗體，不適合用甲醛，會導致磷酸蛋白從膜表面轉移到胞漿中，故應選擇冰冷的無水甲醇或無水乙醇，同時應注意甲醛會揮發，在4-8°C不宜儲存太久。固定時間：取決于組合塊的大小和類型，對于大多數組織，18-24h較為理想，細胞固定時間較短，一般2%的甲醛室溫固定20min即可。以細胞樣品為例：用4%的多聚甲醛固定爬片15min，PBS浸洗玻片3次，每次3min。

熒光的產生：一此化學物質能從外界吸收并儲存能量（如光能、化學能等）而進入激發態，當其從激發態再回復到基態時，過剩的能量可以電磁輻射的形式放射（即發光）。熒光發射的特點是：可產生熒光的分子或原子在接受能量后即刻引起發光；而一旦停止供能，發光（熒光）現象也隨之在瞬間內消失。可以引起發熒光的能量種類很多，由光激發所引起的熒光稱為致熒光。由化學應所引起的稱為化學熒光，由X線或陰極射線引起的分別稱為X線熒光或陰極射線熒光。熒光免疫技術一般應用致熒光物質進行標記。早期的免疫熒光技術是將抗體與示蹤物質結合，用于定位組織或細胞內的抗原物質。

免疫熒光間接法測抗體實驗步驟：滴加0.01mol/L，pH7.4的PBS于已知抗原標本片，10min后棄去，使標本片保持一定濕度。滴加以0.01mol/L，pH7.4的PBS適當稀釋的待檢抗體標本，覆蓋已知抗原標本片。將玻片置于有蓋搪瓷盒內，37℃保溫30min。取出玻片，置于玻片架上，先用0.01mol/L，pH7.4的PBS沖洗1-2次，然后按順序過0.01mol/L，pH7.4的PBS三缸浸泡，每缸5min，不時振蕩。取出玻片，用濾紙吸去多余水分，但不使標本干燥，滴加一滴一定稀釋度的熒光標記的抗人球蛋白抗體。將玻片平放在有蓋搪瓷盒內，37℃保溫30min。重復操作3。取出玻片，用濾紙吸去多余水分，滴加一滴緩沖甘油，再覆以蓋玻片。熒光顯微鏡高倍視野下觀察，結果判定同直接法。免疫熒光技術可以用于研究病毒傳播和免疫應答。TLR4免疫

免疫熒光技術可以用于研究環境污染和毒物作用。PD-1免疫組化

免疫熒光檢測相對于酶檢測的優勢：定量熒光信號的能力（與使用基于酶的方法進行的定性測定相反）；復用能力（可以結合不同發射光譜的熒光染料來檢測多種蛋白質）；熒光染料的光穩定性。免疫熒光技術是根據抗原抗體反應的原理，先將已知的抗原或抗體標記上熒光素，制成熒光抗體，再用這種熒光抗體（或抗原）作為探針檢測組織或細胞內的相應抗原（或抗體）。在組織或細胞內形成的抗原抗體復合物上含有標記的熒光素，利用熒光顯微鏡觀察標本，熒光素受外來激發光的照射而發生明亮的熒光（黃綠色或橘紅色），可以看見熒光所在的組織細胞，從而確定抗原或抗體的性質、定位，以及利用定量技術測定含量。PD-1免疫組化